
常規轉染技術可分為兩大類,一類是瞬時轉染,一類是穩定轉染(*轉染)。前者外源DNA/RNA不整合到宿主染色體中,因此一個宿主細胞中可存在多個拷貝數,產生高水平的表達,但通常只持續幾天,多用于啟動子和其它調控元件的分析。一般來說,超螺旋質粒DNA轉染效率較高,在轉染后24-72小時內(依賴于各種不同的構建)分析結果,常常用到一些報告系統如熒光蛋白,β半乳糖苷酶等來幫助檢測。后者也稱穩定轉染,外源DNA既可以整合到宿主染色體中,也可能作為一種游離體(episome)存在。盡管線性DNA比超螺旋DNA轉入量低但整合率高。外源DNA整合到染色體中概率很小,大約1/104轉染細胞能整合,通常需要通過一些選擇性標記,如來氨丙基轉移酶(APH;抗性基因),潮霉素B磷酸轉移酶(HPH),胸苷激酶(TK)等反復篩選,得到穩定轉染的同源細胞系。
轉染技術的選擇對轉染結果影響也很大,許多轉染方法需要優化DNA與轉染試劑比例,細胞數量,培養及檢測時間等。一些傳統的轉染技術,如DEAE右旋糖苷法,磷酸鈣法,電穿孔法,脂質體法各有利弊,其主要原理及應用特點見下表:
轉染方法 | 原理 | 應用 | 特點 |
磷酸鈣法 | 磷酸鈣DNA復合物吸附細胞膜被細胞內吞 | 穩定轉染 | 不適用于原代細胞 操作簡便但重復性差 有些細胞不適用 |
DEAE-右旋糖苷法 | 帶正電的DEAE-右旋糖苷與核酸帶負電的磷酸骨架相互作用形成的復合物被細胞內吞 | 瞬時性轉染 | 相對簡便、結果可重復 但對細胞有一定的毒副作用 轉染時需除血清 |
電穿孔法 | 高脈沖電壓破壞細胞膜電位,DNA通過膜上形成的小孔導入 | 穩定轉染 | 適用性廣但細胞致死率高,DNA和細胞用量大, 需根據不同細胞類型優化電穿孔實驗條件 |
病毒介導法 | 通過侵染宿主細胞將外源基因整合到染色體中 | 穩定轉染 | 可用于難轉染的細胞、原代細胞,體內細胞等 |
逆轉錄病毒 | 特定宿主細胞 | 但攜帶基因不能太大細胞需處分裂期 需考慮安全因素 | |
腺病毒 | 通過侵染宿主細胞將外源基因整合到染色體中 | 瞬時轉染 | 可用于難轉染的細胞 需考慮安全因素 |
陽離子脂質體法 | 帶正電的脂質體與核酸帶負電的磷酸基團形成復合物被細胞內吞 | 穩定轉染 | 適用性廣,轉染效率高,重復性好,但轉染時需除血清。轉染效果隨細胞類型變化大 |
Biolistic顆粒傳遞法 | 將DNA用顯微重金屬顆粒沉淀,再將包被好的顆粒用彈道裝置投射入細胞,DNA在胞內逐步釋放,表達 | 瞬時性轉染 | 可用于:人的表皮細胞,纖維原細胞,淋巴細胞系以及原代細胞 |
顯微注射法 | 用顯微操作將DNA直接注入靶細胞核 | 穩定轉染 | 轉染細胞數有限 多用于工程改造或轉基因動物的胚胎細胞 |
;除上述傳統方法外,近年來上推出了一些陽離子聚合物基因轉染技術,以其適用宿主范圍廣,操作簡便,對細胞毒性小,轉染效率高受到研究者們的青睞。其中樹枝狀聚合物(Dendrimers)和聚乙烯亞胺(Polyethylenimine,PEI)的轉染性能*,但樹枝狀聚合物的結構不易于進一步改性,且其合成工藝復雜。聚乙烯亞胺是一種具有較高的陽離子電荷密度的有機大分子,每相隔二個碳個原子,即每“第三個原子都是質子化的氨基氮原子,使得聚合物網絡在任何pH下都能充當有效的“質子海綿"(proton sponge)體。這種聚陽離子能將各種報告基因轉入各種種屬細胞,其效果好于脂質聚酰胺,經進一步的改性后,其轉染性能好于樹枝狀聚合物,而且它的細胞毒性低。大量實驗證明,PEI是非常有希望的基因治療載體。目前在設計更復雜的基因載體時,PEI經常做為核心組成成分。
線型PEI(Line PEI,LPEI)與其衍生物用作基因轉染載體的研究比分枝狀PEI(Branched PEI,BPEI)要早一些,過去的研究認為在不考慮具體條件,LPEI/DNA轉染復合物的細胞毒性較低,有利于細胞定位,因此與BPEI相比應該轉染效率高一些。但zui近研究表明BPEI的分枝度高有利于形成小的轉染復合物,從而提高轉染效率,但同時細胞毒性也增大。超高分枝的、較柔性的PEI衍生物含有額外的仲胺基和叔胺基,在染實驗中發現這種PEI的毒性低,但轉染效率卻較高。
訂貨信息
| 貨號 |
|
PEI轉染操作流程:
1、細胞傳代:
轉染前24h內分離293T細胞至含10%胎牛血清的DMEM培養基 中進行傳代培養,接種密度如下:
6孔板:0.5x106細胞
10cm培養皿:4.0x106細胞
15cm培養皿:9.0x106細胞
2 、轉染
轉染前將所有試劑置于室溫。
2.1 質粒DNA的稀釋
在無菌試管中,用無血清的DMEM W / O酚紅培養基(濃度為10%)稀釋質粒DNA(ug)。病毒包裝體(psPAX2):病毒包膜(pMD2G)和重組質粒DNA的稀釋比例分別為4:2:1。
6 孔板:200ul+3ug的DNA
10cm培養皿:1ml+7-8ug的DNA
15cm培養皿:2ml+11-12ug的DNA
2.2 轉染復合體形成
將PEI(1ug/uL)加入已稀釋的總DNA中,PEI與DNA(ug)的混合比率為3:1。加入后立即渦旋混合。
6 孔板:9ul PEI復合體(1ug/ul)=9ug
10cm培養皿:21ul PEI復合體(1ug/ul)=21ug
15cm培養皿:33ul PEI復合體(1ug/ul)=33ug
將添加到細胞的DNA/ PEI的混合物在室溫下孵育15分鐘。
4 、收獲轉染細胞
轉染后48小時內收獲轉染細胞/或病毒上清。
試劑的配制:
PEI(1ug/ul) Polysciences(CAT#23966-2配制成儲液:
1、將無內毒素的無菌水加熱至80℃左右溶解PEI,冷卻到室溫。
2、調整pH值至7.0,用0.22um的濾器過濾消毒,分裝后儲存在-20℃。工作液可保持在4℃。
96孔細胞培養板用量
細胞型號 | 培養基 | 每孔細胞數 | DNA的量 | 轉染試劑量 | 和培養基混合 4-6h |
| 293H | DMEM | 3×104 | 0.2µg | 0.5µL | DMEM+10%FBS |
| 293FT | DMEM | 3×104 | 0.2µg | 0.5µL | DMEM+10%FBS |
| 293E | DMEM | 3×104 | 0.2µg | 0.5µL | DMEM+10%FBS |
| 293F | DMEM | 3×104 | 0.2µg | 0.5µL | DMEM+10%FBS |
| COS7 | DMEM | 1.5×104 | 0.4µg | 0.5µL | DMEM+10%FBS |
| hela | DMEM | 2×104 | 0.3µg | 0.5µL | 1640+15%FBS |
| Caco2 | MEM | 3.5×104 | 0.3µg | 0.75µL | MEM+10%FBS |
| BHK21 | MEM | 2×104 | 0.2µg | 0.5µL | MEM+10%FBS |
| CHO-DG44 | DMEM+HT+pro | 2×104 | 0.5µg | 0.5µL | DMEM+HT+pro +10%FBS |
| RAW264.7 | DMEM | 3×104 | 0.2µg | 0.5µL | DMEM +10%FBS |
| MCF7 | MEM/NEAA+0.01mg/mL insulin + sodium pyruvat | 2×104 | 0.1µg | 0.25µL | MEM/NEAA+0.01mg/mL insulin + sodium pyruvat+10%FBS |
| SW480 | IMDM | 3×104 | 0.4µg | 0.5µL | IMDM +10%FBS |
| MDCK | DMEM | 4×104 | 0.6µg | 1µL | DMEM+10%FBS |
| CHO-K1 | IMDM+Pro | 3×104 | 0.2µg | 0.5µL | IMDM+Pro +10%FBS |
| HepG2 | DMEM | 3×104 | 0.5µg | 0.75µL | DMEM+10%FBS |
| A549 | DMEM | 2×104 | 0.3µg | 0.5µL | DMEM+10%FBS |
| NIH/3T3 | DMEM | 1.5×104 | 0.1µg | 0.75µL | DMEM+10%FBS |
| vero | DMEM | 3×104 | 0.3µg | 0.75µL | DMEM+10%FBS |
| sf9 | SIM SF | 5×104 | 0.4µg | 0.75µL | SIM SF+10%FBS |
PEI于polyplus轉染效率對比圖


訂貨信息
|
友情提醒:
Polyethylenimine, Linear (MW 25,000) 23966-2為Polysciences公司生產的化合物產品,每批產品出廠前都經過嚴格的檢測,保證每批產品都*、穩定且高品質,但由于作為轉染試劑使用過程中有很多實驗室因素(PH,水純度,稱量的準度,dna純度…)造成溶解出現問題或者轉染效率出現差異,所以廠家只受理該產品純度,分子量及重量缺失破損等相關投訴,針對極個別客戶溶解問題和轉染效率問題我們只能友善解決,所以不能保證您能獲得滿意答復,對于產品應用方法的問題,不作為評價我們售后工作的依據。
如果我們提供的PEI手冊都無法解答您的問題,建議您可以多看文獻,多調整一下轉染條件,找出適合自己細胞的轉染方法。如果無暇摸索條件,您也可以直接購買我們配好的轉染試劑,這樣免去您很多煩惱,謝謝理解
電話
微信